Рубрика: Реферируемый журнал «МАСЛИЧНЫЕ КУЛЬТУРЫ. Научно-технический бюллетень ВНИИМК» Страница 15 из 25

УДК 633.853.494:631.52
DOI: 10.25230/2412-608Х-2024-2-198-16-20

Людмила Анатольевна Горлова
Елена Анатольевна Пирогова

ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК
Россия, 350038, г. Краснодар, ул. им. Филатова, д. 17
raps@vniimk.ru
gorchitsa@vniimk.ru

Аннотация. Целью исследований было изучение влияния температуры и влажности воздуха, скорости ветра, облачности и количества осадков на завязываемость семян рапса озимого в условиях центральной зоны Краснодарского края у сортов Элвис, Лорис, Сармат, Селегор и Оливин. Было установлено, что условия, сложившиеся в период цветения 2022 г., характеризовались как благоприятные. Температура воздуха варьировала от 14,3 до 18,3 °C, осадки не препятствовали опылению, их количество за все время цветения составило 12,4 мм. Скорость ветра в среднем по декадам составляла 5,1 м/с, показатели облачности – 32,2 %, и влажности воздуха – 61,1 %, были оптимальными как для процесса самоопыления цветков, так и для переноса пыльцы ветром и насекомыми. Завязываемость семян в среднем составляла 81,3 %. Погодные условия 2023 г. сложились менее благоприятно. Пониженные температуры воздуха – от 12,2 до 16,1 °C, частые осадки – 40 мм, скорость ветра от 2,8 до 4,7 м/с, повышенная облачность – до 85 %, и влажность воздуха до 77,3 % негативно сказались на самоопылении, а также препятствовали переносу пыльцы ветром и насекомыми, тем самым снизив реализацию потенциальной продуктивности на 23,9 %. Наибольшую завязываемость семян в благоприятных и неблагоприятных условиях продемонстрировали сорта Сармат и Селегор. Наименьшую чувствительность к изменению погодных условий во время цветения проявил сорт Элвис. Варьирование признака завязываемости семян в благоприятных условиях у сортов было незначительным (CV = 2,4–7,1 %). Изменение признака количества завязавшихся семян в стручке до сильноизменчивого (CV = 11,7–28,3 %) в условиях 2023 г. говорит о том, что отбор генотипов с высокой завязываемостью семян в стручке возможен именно на фоне неблагоприятных для опыления погодных условий.

Ключевые слова: рапс озимый, температура, осадки, влажность воздуха, скорость ветра, облачность, цветение, завязываемость семян

Для цитирования: Горлова Л.А., Пирогова Е.А. Влияние погодных условий на завязываемость семян рапса озимого в условиях центральной зоны Краснодарского края // Масличные культуры. 2024. Вып. 2 (198). С. 16–20.

Список литературы

1. Клочкова О.С. Формирование габитуса и прохождение этапов органогенеза у растений озимого рапса // Вестник Национальной Академии Наук Белоруссии. – 2008. – № 3. – С. 65–70.

2. Санько Н.В., Жолик Г.А. Цветение и плодообразование озимого рапса // Агросборник. – 2008. – № 4. – С. 178–182.

3. Халилова Л.А. Исходный материал для селекции желтосемянного ярового рапса: дис. … канд. биол. наук: 06.01.05 // Людмила Анатольевна Халилова. – Краснодар, 2002. – 137 с.

4. Синская E.H. Масличные и корнеплоды сем. Cruciferae L. // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. – 1928. – Т. 19. – Вып. 3. – 647 с.

5. Салтыковский А.И. Рапс // Руководство по апробации с.-х. культур. – М.; Л.: Сельхозгиз, 1938. – С. 145–149.

6. Stacey M.F., Gail E.J. The effect of pollination on the growth and reproduction of oilseed rape (Brassica napus) // Basic and Applied Ecology. – 2022. – V. 63. – P. 164–174.

7. Jianwen Z. Effects of different pollination methods on oilseed rape (Brassica napus) plant growth traits and rapeseed yields // Plants. – 2022. – V. 11. – P. 1–13.

8. Andersson G., Olsson G. Cruciferen // Handbuch Pflanzeuzücht. – 1959. – No. 5. – Р. 13–19.

9. Кравцов С.Ю. Биологические основы первичного семеноводства безэруковых сортов рапса и сурепицы: дис. … канд. с.-х. наук // Сергей Юрьевич Кравцов. – М., 1988. – 160 с.

10. Thomas P. Canola Grower’s Manual. – Canada: Canola Council of Canada, 2003. – 71 р.

11. Старикова Д.В., Сырова Ю.Д., Горлова Л.А. Влияние температуры и влажности воздуха на жизнеспособность пыльцы рапса озимого // Масличные культуры. – 2020. – Вып. 3 (183). – С. 51–57.

12. Ченикалова Е.В. Роль энтомофильных культур в сохранении полезной энтомофауны // Проблемы современной науки и образования. ‒ 2018. – № 11 (131). ‒ С. 7–9.

13. Nebojsa N. Melliferous potential of Brassica napus L. subsp. napus (Cruciferae) // Arthropod-Plant Interactions. – 2013. – No. 7. – Р. 323–333.

14. Ченикалова Е.В. Охрана и повышение эффективности природных опылителей в хозяйствах Ставропольского края // Известия Оренбургского ГАУ. – 2019. – № 5 (79). – С. 105–108.

15 Погода: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://agrokeep.com.

Сведения об авторах

Л.А. Горлова, зав. отд., вед. науч. сотр., канд. биол. наук
Е.А. Пирогова, аспирант

УДК 633.853.52:631.522
DOI: 10.25230/2412-608Х-2024-2-198-10-15

Виолетта Георгиевна Савиченко
Светлана Алекеевна Рамазанова
Саида Заурбиевна Гучетль

ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК
Россия, 350038, г. Краснодар, ул. им. Филатова, д. 17
psld.leta@mail.ru

Реферат. Соя является важной культурой в обеспечении продовольственной безопасности страны. Создание новых сортов сои и включение их в Госреестр будет сопровождаться генетической паспортизацией. Целью исследования стал поиск информативных SSR-локусов для дополнения существующей системы ДНК-маркеров для паспортизации сои. Из базы данных SoyBase с помощью онлайнинструмента Primer-BLAST отобрали 27 SSR-локусов. Информативность микросателлитных локусов была оценена на 20 сортах сои. ПЦР-продукты разделяли в ПААГ в денатурирующих условиях. Из 27 отобранных in silico микросателлитных локусов были выбраны 13 высокоинформативных (PIC 0,50–0,72) и пять информативных (PIC 0,44–0,49). Отобранные в результате настоящего исследования микросателлитные локусы могут быть использованы для генотипирования и, совместно с апробированными нами ранее ДНК-маркерами, для паспортизации сортов сои.

Ключевые слова: соя, Glycine max (L.), идентификация, паспортизация, ДНК-маркеры, микросателлиты, SSR

Для цитирования: Савиченко В.Г., Рамазанова С.А., Гучетль С.З. Поиск информативных SSR-маркеров для паспортизации сортов сои // Масличные культуры. 2024. Вып. 2 (198). С. 10–15.

Список литературы

1. SoyStats: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://soystats.com/international-world-oilseed-production/ (дата обращения: 13.02.2024).

2. FAOSTAT: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.fao.org/faostat/ru/ (дата обращения: 13.02.2024).

3. Федеральный закон от 30.12.2021 (в ред. 04.08.2023) № 454-ФЗ «О семеноводстве» // Собрание законодательства РФ (ч. I). – 03.01.2022. – № 1. ст. 23.

4. Zatybekov A., Yermagambetova M., Genievs-kaya Y., Didorenko S., Abugalieva S. Genetic diversity analysis of soybean collection using simple sequence repeat markers // Plants. – 2023. – 12. – 3445. DOI: 10.3390/plants12193445.

5. Gupta S.K., Manjaya J.G. Genetic diversity and population structure of Indian soybean [Glycine max (L.) Merr.] revealed by simple sequence repeat markers // Journal of Crop Science and Biotechnology. – 2017. – No 20. – P. 221–231. DOI: 10.1007/s12892-017-0023-0.

6. Гайнуллина К.П., Кулуев Б.Р., Давлетов Ф.А. Оценка генетического разнообразия сортов и линий гороха с помощью SSR-анализа // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. – 2020. – № 181 (3). – С. 70–80. DOI: 10.30901/2227-8834-2020-3-70-80.

7. Ильницкая Е.Т., Макаркина М.В., Степанов И.В., Супрун И.И., Токмаков С.В., Айба В.Ш., Авидзба М.А., Котляр В.К. Генетический полиморфизм аборигенных абхазских сортов винограда // Вавиловский журнал генетики и селекции. – 2021. – 25 (8). – С. 797–804. DOI: 10.18699/VJ21.092.

8. Колобова О.С., Малюченко О.П., Шалаева Т.В., Шанина Е.П., Шилов И.А., Алексеев Я.И., Велишаева Н.С. Генетическая паспортизация картофеля на основе мультиплексного анализа 10 микросателлитных маркеров // Вавиловский журнал генетики и селекции. – 2017. – № 21 (1). – С. 124–127. DOI: 10.18699/VJ17.230.

9. Канукова К.Р., Газаев И.Х., Сабанчиева Л.К., Боготова З.И., Аппаев С.П. ДНК-маркеры в растениеводстве // Известия Кабардино-Балкарского научного центра РАН. – 2019. – № 6 (92). – С. 220–232.

10. Савиченко В.Г., Рамазанова С.А. Идентификация сортов сои (Glycine max L.) селекции ВНИИМК методом микросателлитного анализа // Сб. мат-лов 11-й Всероссийской конф. молод. уч. и спец. «Актуальные вопросы биологии, селекции, технологии возделывания и переработки сельскохозяйственных культур». – Краснодар, 2021. – С. 97–101.

11. Савиченко В.Г. Идентификация сортов сои на основе полиморфизма SSR-маркеров // Научные труды Северо-Кавказского федерального научного центра садоводства, виноградарства, виноделия. – 2023. – Т. 37. – С. 68–72.

12. SoyBase. Integrating Genetics and Genomics to Advance Soybean Research [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://soybase.org/ (дата обращения: 21.01.2024).

13. Primer-BLAST: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/ primer-blast (дата обращения: 21.01.2024).

14. Ye J., Coulouris G., Zaretskaya I. [et al.]. Primer-BLAST: A tool to design target-specific primers for polymerase chain reaction // BMC Bioinformatics. – 2012. – Vol. 13. – Art. No. 134. DOI: 10.1186/1471-2105-13-134.

Сведения об авторах

В.Г. Савиченко, млад. науч. сотр.
С.А. Рамазанова, вед. науч. сотр., канд. биол. наук
С.З. Гучетль, зав. лаб., вед. науч. сотр., канд. биол. наук

УДК 633.853.52:575
DOI: 10.25230/2412-608Х-2024-2-198-3-9

¹Сергей Владимирович Иванов
²Светлана Алексеевна Рамазанова
²Саида Заурбиевна Гучетль
²Марина Валериевна Трунова

¹ФГБОУ ВО «Кубанский ГАУ»
Россия, 350044, г. Краснодар, ул. Калинина, д. 13
Sergey.ivanov23042000@gmail.com

²ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК
Россия, 350038, г. Краснодар, ул. им. Филатова, д. 17
molecula.genetic@vniimk.ru

Аннотация. Соя – одна из важнейших масличных и кормовых культур. В ней содержится большое количество масла, белка, витаминов и других ценных нутриентов. Возделываемая площадь сои в России увеличивается ежегодно в направлении центральных и сибирских регионов страны. Однако соя очень чувствительная к фотопериоду, что имеет ключевое значение для регуляции её роста и развития. Идентификация генов, контролирующих фотопериодическую чувствительность в сортах сои, важна для селекции новых адаптивных сортов. ДНК-маркеры являются эффективным инструментом для проведения работ по отбору ценных генотипов из селекционного материала. В работе проведена идентификация генов, вносящих наибольший вклад в снижение чувствительности к длине дня у сои. Оценку проводили на шести сортах, пяти линиях поколений F₆–F₇ и пяти гибридах сои F₁. Для этого использовали шесть молекулярных маркеров. Анализ показал, что больше всего рецессивных аллелей у сортов Элана и Баргузин, которые относятся к очень раннеспелым сортам, больше всего доминантных аллелей у сорта Мамонт, что относит его к среднеспелым сортам. Остальные образцы характеризовались наличием двух или трех рецессивных аллелей и относились к группам спелости от ранней до среднеранней. Анализ гибридных комбинаций показал, что молекулярный маркер на ген Е3 наследуется кодоминантно, что позволяет использовать его для контроля переноса желаемых генов при скрещиваниях в потомстве. Таким образом, использование молекулярно-генетиче-ских маркеров показало эффективность в отборе по исследуемому признаку и может применяться в селекционном процессе.

Ключевые слова: соя, Е-гены, фотопериодическая чувствительность, сорт, гибрид, линия, маркер, ДНК

Для цитирования: Иванов С.В.,Рамазанова С.А., Гучетль С.З., Трунова М.В. Использование молекулярно-генетических маркеров для идентификации генов чувствительности к фотопериоду в селекционном материале сои // Масличные культуры. 2024. Вып. 2 (198). С. 3–9.

Список литературы

1. Рынок сои в 2022 году: тенденции и прогнозы: [Электронный ресурс]. Экспертно-аналитический центр агробизнеса: – Режим доступа: https://ab-centre.ru/news/rynok-soi-v-2022-godu-tendencii-i-rognozy.

2. Watanabe S., Xia Z., Hideshima R. [et al.]. A map-based cloning strategy employing a residual heterozygous line reveals that the GIGANTEA gene is involved in soybean maturity and flowering // Genetics. – 2011. – Vol. 188. – No. 2. – P. 395–407.

3. Xia Z., Watanabe S., Yamada T. [et al.]. Positional cloning and characterization reveal the molecular basis for soybean maturity locus E1 that regulates photoperiodic flowering // Proc. of Nation. Acad. Sci. USA. – 2012. – Vol. 109. – No. 32. – P. E2155–E2164.

4. Tsubokura Y., Watanabe S., Xia Z. [et al.]. Natural variation in the genes responsible for maturity loci E1, E2, E3 and E4 in soybean // Ann. Bot. – 2014. – Vol. 113. – No. 3. – P. 429–441.

5. Liu B., Kanazawa A., Matsumura H., Takahashi R., Harada K., Abe J. Genetic redundancy in soybean photoresponses associated with duplication of phytochrome A gene // Genetics.–2008. – 180 (2). – P. 995–1007.

6. Watanabe S., Hideshima R., Xia Z. [et al.]. Map-based cloning of the gene associated with the soybean maturity locus E3 // Genetics. – 2009. – 182 (4). – P. 1251–1262.

7. Федорина Я.В., Хлесткина Е.К., Сеферова И.В., Вишнякова М.А. Молекулярно-генетические механизмы, лежащие в основе продвижения ареала возделывания сои к северу // Экологическая генетика. – 2022. – Т. 20. – № 1. – С. 13–30.

8. Перфильев Р.Н., Щербань А.Б., Салина Е.А. Разработка панели маркеров для генотипирования отечественных сортов сои по генам, контролирующим срок вегетации и реакцию на фотопериод // Вавиловский журнал генетики и селекции. – 2021. – 25 (7). – С. 761–769.

9. Xu M., Xu Z., Liu B., Kong F., Tsubokura Y., Watanabe S., Xia Z., Harada K., Kanazawa A., Yamada T., Abe J. Genetic variation in four maturity genes affects photoperiod insensitivity and PHYA-regulated post-flowering responses of soybean // BMC Plant Biol. –2013. – No. 13. – Art. No. 91.

Сведения об авторах

С.В. Иванов, магистрант
С.А. Рамазанова, вед. науч. сотр., канд. биол. наук
С.З. Гучетль, зав. лаб., вед. науч. сотр., канд. биол. наук
М.В. Трунова, зам. директора по научной работе, канд. биол. наук

УДК 631.52:633.853.494
https://doi.org/10.25230/2412-608X-2025-4-204-151-156

Бочкарева Эмма Борисовна

Евгений Александрович Стрельников

Людмила Анатольевна Горлова*
Вадим Владимирович Сердюк
Дарья Владимировна Старикова
Юлия Дмитриевна Сырова
Алена Александровна Голова
Елена Анатольевна Пирогова

ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК
Россия, 350038, г. Краснодар, ул. им. Филатова, д. 17
*raps@vniimk.ru

Аннотация. Простой межлинейный гибрид рапса озимого Мерло (ВН-2126) создан на основе скрещивания линий ВН-9 (материнская форма) и ОРК-10 (отцовская форма) с использованием системы ЦМС Ogura. Гибрид Мерло относится к группе среднеранних сортов и гибридов, характеризуется выравненностью растений, дружностью цветения и созревания, технологичностью в уборке. В конкурсном испытании за 2022–2023 гг. гибрид Мерло превысил стандартный гибрид Дебют по урожайности на 0,39 т/га, по сбору масла –на 0,12 т/га. По аналогичным показателям новый гибрид превысил сорт-стандарт Лорис на 1,41 и 0,58 т/га соответственно, а иностранный гибрид Фактор – на 0,28 и 0,09 т/га. Масса 1000 семян нового гибрида в среднем за 2 года составила 4,4 г, у гибрида Дебют – 4,9 г, у гибрида Фактор – 4,4 г. Новый гибрид обладает устойчивостью к осыпанию. Родительские компоненты гибрида Мерло хорошо совпадают по срокам цветения. Материнская линия ВН-9 (№ 1981) характеризуется урожайностью и масличностью семян на уровне сорта-стандарта, низким содержанием глюкозинолатов в семенах – 13,7 мкмоль/г. Отцовская линия ОРК-10 уступает по продуктивности материнской линии, но отличается устойчивостью к осыпанию семян.

Ключевые слова: рапс озимый, простой межлинейный гибрид, урожайность, масличность, масса 1000 семян, устойчивость к осыпанию, родительские линии

Для цитирования: Бочкарева Э.М., Стрельников Е.А., Горлова Л.А., Сердюк В.В., Старикова Д.В., Сырова Ю.Д., Голова А.А., Пирогова Е.А. Простой межлинейный гибрид рапса озимого Мерло селекции ВНИИМК // Масличные культуры. 2025. Вып. 4 (204). С. 151–156.

Список источников

1. Бушнев А.С., Орехов Г.И., Горлова Л.А. Потенциал производства рапса озимого на юге России // Агрофорум. – 2020. – № 5. – С. 31–34.

2. Анохина М. Масличные в новом сезоне будут самыми рентабельными // Аграрная Кубань. – 15 мая 2024 г. – № 8 (445). – С. 19.

3. Despeghel J. P., Guguin N. Development of high yielding resistant oilseed rape hybrids for France // Abstracts of the 12^th Intern. Rapeseed Congress, Wuhan, China. – 2007. – Vol. 2. – P. 298.

4. Frauen M., Noack J., Girke A., Paulmann W. Ten years experience of development and cultivation of winter oilseed rape hybrids in Europe on the MSL system // Proc. of the 12^th Intern. Rapeseed Congress, Wuhan, China. – 2007. – Vol. 1. – P. 39–41.

5. Ma C., Gao C., Zhang J., Fu T., Shen J. Hybrid breeding using a two-line self-incompatibility system in Brassica napus L. // Abstracts Book of the 13^th International Rapeseed Congress, Prague, Czech Republic. – 2011. – P. 38.

6. Анисимова И.Н., Дубовская А.Г. Системы ЦМС у рапса и их использование в селекции отечественных гибридов // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. – 2020. – Т. 181. – Вып. 3. – С. 171–180.

7. А. с. № 81585 РФ Гибрид рапса озимого Дебют / Бочкарева Э.Б., Горлова Л.А., Сердюк В.В., Стрельников Е.А. – По заявке № 7953500 от 30.09.2020; зарегистрирован 19.10.2023.

8. Горлов С.Л. Селекция озимого рапса (Brassica napus) на гетерозис: дис. … канд. с.-х. наук. – Краснодар, 1995. – 141 с.

9. Бобко Н.Н., Пилюк Я.Э. Оценка инбредных линий озимого рапса (Brassica napus L.) для селекции на гетерозис // Земледелие и селекция в Беларуси. – Жодино, 2018. – № 54. – С. 316–325.

10. Воскресенская Г.С., Шпота В.И. Горчица сарептская // Руководство по селекции и семеноводству масличных культур. – М.: Колос, 1967. – С. 173–237.

11. ГОСТ 8.597-2010. Семена масличных культур и продукты их переработки. Методика измерений масличности и влажности методом импульсного ядерного резонанса. – М.: Стандартинформ, 2019. – 8 с.

12. Осик Н.С., Швецова В.П. Метод быстрой оценки общего содержания глюкозинолатов в семенах семейства капустных для целей селекции // Науч.-тех. бюл. ВНИИМК. – 1996. – Вып. 113. – С. 98–99.

13. Ефименко С.Г., Ефименко С.К. Усовершенствованная методика определения содержания глюкозинолатов в семенах масличных культур семейства Brassicaceae // Масличные культуры. – 2024. – Вып. 4 (200). – С. 45–51.

14. Пивень В.Т., Сердюк О.А. Фитосанитарный мониторинг болезней рапса // Масличные культуры. Науч.-тех. бюл. ВНИИМК. – Вып. 2 (148–149). – С. 162–166.

15. Стрельников Е.А., Горлова Л.А. Способ оценки селекционного материала рапса озимого по признаку устойчивости к растрескиванию стручка // Сб. мат-лов 12-й Междунар. конф. молодых учёных и специалистов «Актуальные вопросы биологии, селекции, технологии возделывания и переработки сельскохозяйственных культур». – Краснодар: ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК, 2023. – С. 278–283.

16. Varenne P., Despegel J.P., Guguin N., Kryvulko R. Breeding for a seed pod shattering resistance in ORU – INRA WOSR hybrids // Abstracts Book of the 13^th Intern. Rapeseed Congress, Prague, Czech Republic. – 2011. – P. 39.

Сведения об авторах

Э.Б. Бочкарева, гл. науч. сотр., д-р с.-х. наук
Е.А. Стрельников, зав. лаб., вед. науч. сотр., канд. биол. наук
Л.А. Горлова, зав. отд., вед. науч. сотр., канд. биол. наук
В.В. Сердюк, ст. науч. сотр.
Д.В. Старикова, науч. сотр.
Ю.Д. Сырова, науч. сотр.
А.А. Голова, науч. сотр.
Е.А. Пирогова, мл. науч. сотр.

УДК 631.42:631.171
https://doi.org/10.25230/2412-608X-2025-4-204-144-150

Сергей Сергеевич Макаров*
Георгий Викторович Кочуров

ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК
Россия, 350038, г. Краснодар, ул. им. Филатова, д. 17
*sergey_makarov_82@list.ru

Аннотация. Для получения хорошего урожая в сельскохозяйственной отрасли необходим качественный агрохимический анализ почвы. Для получения наилучшего результата при анализе состава почв используют устройства для отбора проб почвы. Целью настоящих исследований являлось создание универсального полуавтоматического устройства для отбора проб почвы с глубины до 2 м, позволяющего минимизировать затраты труда и время на отбор. Анализ материалов патентного поиска показал, что основными недостатками существующих способов и устройств для отбора проб почвы являются в основном их низкая эффективность, связанная с большими трудозатратами и сложностью конструкций. Анализ конструкций разработанных ранее устройств для отбора проб почвы, а также проведенные исследования в отделе механизации ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК позволили разработать переносное устройство для отбора проб почвы на аккумуляторе с глубины 2 метра круглого сечения (керном) без смешения слоев почвы с разной глубины залегания. Был создан экспериментальный образец переносного устройства для отбора проб почвы на аккумуляторе, которое может эксплуатироваться с автотранспортом и может быть запитано от штатной аккумуляторной батареи. Экспериментальное устройство эффективно осуществляет отбор проб почвы с глубины 2 м без использования ручного труда оператора на заглубление и извлечение пробоотборника. Полученные результаты показали высокую надежность работы устройства, небольшое время на взятие и обработку образца почвы (около 20–25 мин на каждую пробу) с делением каждой пробы на 10 частей и загрузкой этих частей в бюксы, легкое приведение устройства из рабочего в транспортное положение и обратно при переезде по полю на заданные участки отбора почвы, минимальные затраты физического труда, оригинальный способ извлечения пробы почвы из пробоотборника с делением пробы на заданное число частей. В ходе предварительных испытаний выявлен ряд недостатков, требующих более детального изучения процесса отбора проб почвы, из-за неоднородности физико-механических свойств почвы в разных слоях.

Ключевые слова: проба почвы, пробоотборник, конструкция устройств, агрохимический анализ почвы

Для цитирования: Макаров С.С., Кочуров Г.В. Устройство для отбора проб почвы // Масличные культуры. 2025. Вып. 4 (204). С. 144–150.

Список источников

1. Патент 3331249 США, E21B49/02. Soil sampling device and means for mounting the same on a vehicle / Philip E. Boxread, Madelia, Minn. 56062. – № 423035; заявл. 04.01.65; опубл. 18.07.84.

2. А.с. № 645050 СССР, G01N1/08. Устройство для отбора проб / П.А. Курунин, М.И. Полняков, Н.Г. Матвиенко. – № 2104442/25-26; заявл. 11.02.75; опубл. 30.01.79. Бюл. № 4.

3. А.с. № 947682 СССР, G01N1/08. Устройство для отбора проб / В.М. Болотин, А.И. Дрига, О.В. Студенцов [и др.]. – № 3009257/25-26; заявл. 10.10.80; опубл. 30.07.82. Бюл. № 28.

4. А.с № 1089457 СССР, G01N1/04. Устройство для отбора проб почвы / А.Г. Демченко, Г.В. Кочуров, Н.Г. Матвиенко. – № 3561421/23-26; заявл. 28.02.83; опубл. 30.04.84. Бюл. № 16.

5. Патент № 2812193, RU, МПК F26B 3/04. Способ отбора проб почвы и устройство для его осуществления / Г.В. Кочуров, С.С. Макаров. – № 2023104088; заявл. 21.02.2023; опубл. 24.01.2024. Бюл. № 3.

Сведения об авторах

С.С. Макаров, ст. науч. сотр.
Г.В. Кочуров, вед. инженер-конструктор

УДК 579.8.06:632.913.1
https://doi.org/10.25230/2412-608X-2025-4-204-134-143

^1,3Анастасия Андреевна Трошкова*
^1,2Ольга Юрьевна Словарева

¹Всероссийский центр карантина растенийРоссия, 140150, Московская обл., м.о. Раменский, пгт. Быково, ул. Пограничная, 32

²Российский университет дружбы народов
Россия, 117198, г. Москва, ул. Миклухо-Маклая, 6

³РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева
Россия, 127434, г. Москва, ул. Тимирязевская, 49
*anades13@yandex.ru

Аннотация. Точная видовая идентификация фитопатогена, невозможная в отсутствие четкого определения названия и границ таксона, является фундаментом для разработки эффективных мер защиты растений. Бактерия Acidovorax avenae subsp. avenae, возбудитель бактериальной полосатости и ожога листьев злаков, представляет собой серьезную угрозу для производства зерна во всем мире, поражая такие стратегически важные культуры, как пшеница, рис и кукуруза. История номенклатуры данного фитопатогена наглядно демонстрирует, как развитие молекулярно-генетических методов влияет на пересмотр устоявшихся классификаций. Обилие синонимов создает препятствие на пути международного контроля A. avenae subsp. avenae. В результате исследования, проведено уточнение номенклатуры фитопатогена, прослежена его эволюция от первого описания в 1909 г. как Pseudomonas avenae Manns 1909, собрана детальная информация о существующих синонимах. Установлено, что наиболее точным, с точки зрения фитосанитарии, официальным научным названием является Acidovorax avenae subsp. avenae (Manns 1909) Willems et al. 1992. Определен перечень стран, для которых данный фитопатоген является регулируемым организмом: Буркина-Фасо, Ботсвана, Гвинея, Египет, Израиль, Индия, Китай, Куба, Малайзия, Мали, Мексика, Никарагуа, Судан, Тайвань (Китай) и Эквадор. Продукцией, на которой регулируетсяA. avenae subsp. avenae, является пшеница, рис, кукуруза, сахарный тростник, овес, ячмень, сорго, просо, газонные травы и другие злаки. Проведенное исследование имеет прямую практическую ценность для фитосанитарной службы Российской Федерации, поскольку позволяет выстраивать эффективную систему проверки растениеводческой продукции и семенного материала при международной торговле, минимизируя риски распространения опасного фитопатогена.

Ключевые слова: карантин растений, фитосанитария, классификация микроорганизмов, экспорт зерна, сельскохозяйственная микробиология

Финансирование: работа выполнена в рамках Государственного задания, регистрационный номер ЕГИСУ НИОКТР 124022800055-1.

Для цитирования: Трошкова А.А., Словарева О.Ю. Фитосанитарный статус и эволюция номенклатуры возбудителя бактериальной полосатости и ожога листьев злаков Acidovorax avenae subsp. avenae (Manns 1909) Willems et al. 1992 // Масличные культуры. 2025. Вып. 4 (204). С. 134–143.

Список источников

1. Manns T.F. The blade blight of oats – a bacterial disease // Bulletin of the Ohio Agriculture Experiment Station. – 1909. – Vol. 210. – Рp. 91–167.

2. Cortesi P., Bartoli F., Pizzatti C. [et al.]. First report of Acidovorax avenae ssp. avenae on rice in Italy // Journal of Plant Pathology. – 2005. – Vol. 87 (1). – Рp. 75–76.

3. Ji C., Ou J., Xu D., Pan R. First report of corn bacterial leaf stripe caused by Acidovorax avenae in Guangdong Province, China // Plant Disease. – 2014. – Vol. 98 (10). – Р. 1424. https://doi.org/10.1094/PDIS-03-14-0334-PDN.

4. Pataky J.K., Toit L.J. du, Kerns M.R. Bacterial leaf blight on shrunken-2 sweet corn // Plant Disease. – 1997. – Vol. 81 (11). – Рp. 1293–1298. https://doi.org/10.1094/PDIS.1997.81.11.1293.

5. Myung I.S., Choi J.K., Wu J.M. [et al.]. Bacterial stripe of hog millet caused by Acidovorax avenae subsp. avenae, a new disease in Korea // Plant Disease. – 2012. – Vol. 96 (8). – Рp. 1222–1223. https://doi.org/10.1094/PDIS-03-12-0320-PDN.

6. Fontana P.D., Rago A.M., Fontana C.A. [et al.]. Isolation and genetic characterization of Acidovorax avenae from red stripe infected sugarcane in Northwestern Argentina // European Journal of Plant Pathology. – 2013. – Vol. 137 (3). – Рp. 525–534. https://doi.org/10.1007/s10658-013-0263-y.

7. Tominaga T. Studies on the diseases of forage crops in Japan. II. Etiological studies on the bacterial diseases of forage crops in Japan // Bull. Nat. Inst. Agric. Sci. – 1971. – Vol. 25. – Рp. 205–306.

8. Гребенников К.А., Кулакова Ю.Ю. К вопросу о таксономическом статусе и фитосанитарном значении пшеничного клопа Blissus leucopterus (Say, 1832) // Фитосанитария. Карантин растений. – 2024. – № 4 (21). – С. 17–25. https://doi.org/10.69536/FKR.2024.94.31.003.

9. Schoch C.L. [et al.]. NCBI Taxonomy: a comprehensive update on curation, resources and tools. Database (Oxford). 2020: baaa062. PubMed: 32761142 PMC: PMC7408187 [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.ncbi.-nlm.nih.gov/Taxonomy/Brow-ser/wwwtax.cgi?command=show&mode=node&
id=643561&lvl= (дата обращения: 30.10.2025).

10. Schaad N.W., Kado C.I., Sumner D.R. Synonymy of Pseudomonas avenae 1905 (sic) and Pseudomonas alboprecipitans Rosen 1922 // Intern. J. System. Bacteriology. – 1975. – Vol. 25. – Pp. 133–137.

11. Young J.M., Dye D.W., Bradbury J.F., Panagopoulos C.G., Robbs C.F. A proposed nomenclature and classification for plant pathogenic bacteria // N. Z. J. Agric. Res. – 1978. – Vol. 21 (1). – Рp. 153–177. https://doi.org/10.1080/002-88233.1978.10427397.

12. Skerman V.B.D., McGowan V., Sneath P.H.A. Approved lists of bacterial names //
Intern. J. Syst. Bacteriol. – 1980. – Vol. 30 (1). – Рp. 225–420.

13. Ramundo B.A., Claflin L.E. Demonstration of synonymy between the plant pathogens Pseudomonas avenae and Pseudomonas rubrilineans // J. Gen. Microbiol. – 1990. – Vol. 136. – Pp. 2029–2033.

14. Rosen H.R. A bacterial disease of foxtail (Chaetochloa lutescens) // Ann. Mo. Bot. Gard. – 1922. – Vol. 9 (4). – Рp. 333–385.

15. Lee H.A., Puedy H.A., Barnum C.C., Martin J.P. A comparison of red-stripe disease with bacterial diseases of sugar cane and other grasses in red-stripe disease studies // Bul. Exp. Station of the Hawaiian Sugar Planters’ Association. – 1925. – Рp. 64–74.

16. Stapp C. Schizomycetes (Spaltpilze oder Bakterien) // Handbuch der Pflanzenkrankheiten / Ed. P. Sorauer. – 1928. – Vol. 2 (5). – Pp. 1–295.

17. Okabe N. Bacterial diseases of plants occurring in Formosa // Journal of the Society of Tropical Agriculture. – 1934. – Vol. 6. – Рp. 54–63.

18. Starr M.P., Burkholder W.H. Lipolytic activity of phytopathogenic bacteria determined by means of spirit blue agar and its taxonomic significance // Phytopathology. – 1942. – Vol. 32 (7). – Рp. 598–604.

19. Savulescu T. Contribution a la classification des bactkriacees phytopathogenes // An. Acad. Romane Ser. – 1947. – Vol. 111 (22). – Рp. 135–160.

20. Goto K., Ohata K.I. Bacterial stripe of rice // Spec. Publ. Coll. Agric. Nat. Taiwan Univ. – 1961. – Vol. 10. – Pp. 1049–1060.

21. Tominaga T. Brown stripe of bromgrasses and wheatgrasses caused by Pseudomonas setariae (Okabe) Savulescu // Nihon saikingaku zasshi (Japanese Journal of Bacteriology). – 1968. – Vol. 23 (3). – Рp. 176–183 (in Jap.).

22. Hu F.P., Young J.M., Triggs C.M. Numerical analysis and determinative tests for nonfluorescent plant-pathogenic Pseudomonas spp. and genomic analysis and reclassification of species related to Pseudomonas avenae Manns 1909 // Int. J. Syst. Bacteriol. – 1991. – Vol. 41. – Рp. 516–525.

23. Willems A., Goor M., Thielemans S. [et al.]. Transfer of several phytopathogenic Pseudomonas species to Acidovorax as Acidovorax avenae subsp. avenae subsp. nov., comb. nov., Acidovorax avenae subsp. citrulli, Acidovorax avenae subsp. cattleyae, and Acidovorax konjaci // Intern. J. System. Bacteriol. – 1992. – Vol. 42 (1). – Рp. 107–119.

24. Schaad N.W., Postnikova E., Sechler A. [et al.]. Reclassification of subspecies of Acidovorax avenae as A. avenae (Manns 1905) emend., A. cattleyae (Pavarino, 1911) comb. nov., A. citrulli Schaad et al., 1978) comb. nov., and proposal of A. oryzae sp. Nov // Syst. Appl. Microbiol. – 2008. – Vol. 31. – Iss. 6–8. – Pp. 434–446. http://doi.org/10.1016/j.syapm.2008.09.003.

25. Du J., Liu Y., Zhu H. Genome-based analyses of the genus Acidovorax: proposal of the two novel genera Paracidovorax gen. nov., Paenacidovorax gen. nov. and the reclassification of Acidovorax antarcticus as Comamonas antarctica comb. nov. and emended description of the genus Acidovorax // Arch. Microbiol. – 2023. – Vol. 205 (1). – Art. No. 42. https://doi.org/10.1007/s00203-022-03379-7.

26. Osdaghi E. Acidovorax avenae (bacterial leaf blight of grasses) // CABI Compendium. – 2022. – 44935. https://doi.org/10.1079/cabicompendium.44935.

27. Фитосанитарные требования. Буркина-Фасо // Россельхознадзор: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/importexport/burkina-faso/burkina-faso-fitosanitar-nye-trebovanija/ (дата обращения: 20.09.2025)

28. Актуализированный перечень карантинных вредных организмов. Ботсвана // Россельхознадзор: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/files/aktualizirovannyj-perechen-karantinnyh-vrednyh-orga-nizmov-botsvana/ (дата обращения: 20.09.2025).

29. Фитосанитарные требования Гвинеи // Россельхознадзор: [Электронный ресурс] – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/importexport/
gvineya/export-38/ (дата обращения: 20.09.2025).

30. Фитосанитарные требования в области карантина растений. Египет // Россельхознадзор: [Электронный ресурс] – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/importexport/egipet/export-52/ (дата обращения: 20.09.2025).

31. Фитосанитарные требования Египта к импорту зерновых культур. Требования к импорту пшеницы, желтой кукурузы и сои // Россельхознадзор: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/importexport/egipet/jeksport-zerna-14/ (дата обращения: 20.09.2025).

32. Перечень карантинных вредных орга-низмов Израиля // Россельхознадзор: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/importexport/izrail/export-55/ (дата обращения: 20.09.2025).

33. Обновленные фитосанитарные требования при импорте продукции растительного происхождения в Индию // Россельхознадзор: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/importexport/indiya/export-56/ (дата обращения: 20.09.2025).

34. Карантинные требования к импорту растений или растительной продукции в Китайскую Республику // Россельхознадзор: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/files/karantinnye-trebovanija-k-importu-rastenij-ili-rastitelnoj-produkcii-v-kita-jskuju-respubliku/ (дата обращения: 20.09.2025).

35. Список регулируемых вредных организмов Кубы // Россельхознадзор: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/
importexport/kuba/jeksport-zerna-7/ (дата обращения: 20.09.2025).

36. Фитосанитарные требования Малайзии к импортируемому зерну, установленные национальным законодательством в области карантина растений // Россельхознадзор: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/importexport/malayziya/export-99/ (дата обращения: 20.09.2025).

37. Обновленные фитосанитарные требования Мали // Россельхознадзор: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/
importexport/mali/export-100/ (дата обращения: 20.09.2025).

38. Список регламентируемых объектов для Мексики // Россельхознадзор: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/
importexport/meksika/meksika-jeksport-zerna/ (дата обращения: 20.09.2025).

39. Перечень карантинных вредных организмов Никарагуа // Россельхознадзор: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/files/perechen-karantinnyh-vr-ednyh-organizmov-nikaragua/ (дата обращения: 20.09.2025).

40. Перечень карантинных вредных объектов Судана // Россельхознадзор: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/
importexport/sudan/export-143/ (дата обращения: 20.09.2025).

41. Карантинные фитосанитарные требования для ввоза растений и растительной продукции в Тайвань // Россельхознадзор: [Электрон-ный ресурс]. – Режим доступа: https://fsvps.-gov.ru/importexport/tayvan-kitay/export-149/ (дата обращения: 20.09.2025).

42. Перечень карантинных вредных организмов Эквадора // Россельхознадзор: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/files/perechen-karantinnyh-vr-ednyh-organizmov-jekvadora/ (дата обращения: 20.09.2025).

43. Oren A., Arahal D.A., Göker M. [et al.]. International code of nomenclature of prokaryotes. Prokaryotic code (2022 Revision) // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. – 2023. – Vol. 73. Iss. 5a. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.005585.

44. Garrity G.M., Cole J.R. The taxonomic outline of bacteria and archaea: monograph. – 2007. http://doi.org/10.1601/toba7.7.

45. Parte A.C., Sardà Carbasse J., Meier-Kolthoff J.P. [et al.]. List of prokaryotic names with standing in nomenclature (LPSN) moves to the DSMZ // Intern. J. Systematic and Evolutionary Microbiology. – 2020. – Vol. 70. – Iss. 11. – Pp. 5607–5612. http://doi.org/10.1099/ijsem.0.-004332.

Сведения об авторах

А.А. Трошкова, мл. науч. сотр., аспирант
О.Ю. Словарева, нач. отд., ст. науч. сотр., канд. биол. наук, доцент

УДК 633.853.494:632.937
https://doi.org/10.25230/2412-608X-2025-4-204-125-133

Любовь Васильевна Маслиенко*
Евгения Алексеевна Заверюха
Любовь Анатольевна Дейнега
Анастасия Владиславовна Кузнецова
Татьяна Вячеславовна Мусынова

ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК
Россия, 350038, г. Краснодар, ул. им. Филатова, д. 17
*biometod@vniimk.ru

Аннотация. С целью создания экологически безопасных микробиологических препаратов был проведен первичный скрининг бактериальных штаммов из рабочей коллекции лаборатории биометода ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК к возбудителю альтернариоза рапса озимого Alternaria brassicicola (Schwein.) Wiltshire методом двойных, или встречных, культур. Среди бактерий рода Bacillus
23 штамма обладали только антибиотической активностью, образуя стерильную зону от 0,5 до 9,5 мм на двух питательных средах: картофельно-сахарозном агаре (КСА) и Тайлона-3. Максимальная стерильная зона установлена у пяти штаммов: P-9 B. polymyxa (9,5 мм), 5Б-1 B. subtilis (8,0 мм), Б (2-1) B. licheniformis (7,5 мм), K 1-1 B. subtilis (7,5 мм), Fz 9 Bacillus sp. (7,0 мм). Все девять штаммов бактерий рода Pseudomonas обладали антагонистической активностью к возбудителю альтернариоза также с одним типом механизма действия – антибиозом (0,5–10,5 мм). Наибольшая стерильная зона на средах КСА и Кинга В отмечена у штамма 12-2 Pseudomonas sp. (3,0 и 10,5 мм).

Ключевые слова: первичный скрининг, бактериальные штаммы антагонисты, микробиологический метод, альтернариоз рапса озимого, черная пятнистость, Alternaria brassicicola

Для цитирования: Маслиенко Л.В., Заверюха Е.А., Дейнега Л.А., Кузнецова А.В., Мусынова Т.В. Первичный скрининг коллекционных бактериальных штаммов к возбудителю альтернариоза рапса озимого Alternaria brassicicola in vitro // Масличные культуры. 2025. Вып. 4 (204). С. 125–133.

Список источников

1. Pedras M.S.C. [et al.].The phytopathogenic fungus Alternaria brassicicola: phytotoxin production and phytoalexin elicitation // Phytochemistry. – 2009. – Vol. 70. – No. 3. – Pp. 394–402.

2. Пивень В.Т., Сердюк О.А. Фитосанитарный мониторинг болезней рапса // Масличные культуры. Науч.-тех. бюл. ВНИИМК. – 2011. – № 2 (148–149). – С. 162–167.

3. Chavda H., Thesiya M. Diseases of rapeseed and mustard crop // Diseases of Field Crops and their Management. – Astral International Pvt. Ltd., 2024. – 346 p.

4. Ганнибал Ф.Б., Гасич Е.Л. Возбудители альтернариоза растений семейства крестоцветные в России: видовой состав, география и экология // Микология и фитопатология. – 2009. – Т. 43. – № 5. – С. 79–88.

5. Ашмарина Л.Ф., Коняева Н.М., Коробейников А.С. Пораженность различных сортов рапса наиболее распространенными в Западной Сибири заболеваниями // Вестник Новосибирского ГАУ. – 2016. – № 1. – С. 28–34.

6. Сердюк О.А., Трубина В.С., Горлова Л.А. Вредоносность болезней рапса и горчицы сарептской в условиях центральной зоны Краснодарского края // Научные приоритеты адаптив-ной интенсификации сельскохозяйственного производства: мат-лы Междунар. науч.-практич. конф. с элементами школы молодых ученых, г. Краснодар, 03–05 июля 2019 г. – Краснодар: Издательство «ЭДВИ», 2019. – С. 172–173.

7. Лешкевич Н.В. Патогенный комплекс грибов, паразитирующих на озимом рапсе (лит. обзор) // Защита растений. – 2022. – № 42. –
С. 116–134.

8. Fung F., Tappen D., Wood G. Alternaria – associated asthma // Appl. Occup. Environ. Hygiene. – 2000. – No. 15. – Pp. 924–927.

9. Mridna M.A.U., Wheeler B.E.J. In vitro effects of temperature and wet periods on infection of oilseed rape by Alternaria brassicae // Plant Pathology. – 1993. – No. 42. – Pp. 671–675.

10. Картамышева Е.В. [и др.]. Совершенствование технологии возделывания озимых рапса (Brassica napus L.) и рыжика (Camelina sativa L.) Crantz) на семена в Приазовской зоне Ростовской области // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского ГАУ. – 2018. – № 139. – С. 17–37.

11. Пивень В.Т., Горлов С.Л., Семеренко С.А. Основные элементы интегрированной системы защиты рапса от вредителей и болезней в Северо-Кавказском регионе // Земледелие. – 2009. – № 2. – С. 36–37.

12. Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации / Министерство сельского хозяйства Российской Федерации. – М., 2025. – 852 с.

13. Maslienko L. [et al.].Secondary screening of strains of antagonists to a Phoma pathogen on sunflower // BIO Web of Conferences. – EDP Sciences, 2020. – Vol. 21. – Art. No. 00017.

14. Дейнега Л.А., Маслиенко Л.В., Ефимцева Е.А. Способность перспективных штаммов антагонистов возбудителя сухой гнили Rhizopus oryzae колонизировать растущий корень подсолнечника на фоне искусственного заражения проростков в лабораторных условиях // Защита растений от вредных организмов: мат-лы XI междунар. науч.-практ. конф., 19–23 июня 2023 г. – Вып. 11. – С. 117–119.

15. Егоров Н.С. Выделение микробов антагонистов и биологические методы учета их антибиотической активности. – М., 1957. – 78 с.

16. Егоров Н.С. Основы учения об антибиотиках. – М.: Наука, 2004. – 528 с.

17. King E.D., Ward M.K., Raney D.E. Two simple media for the demonstration of pyocyanin and fluorescin // Journal of Laboratory and Clinical Medicine. – 1954. – Vol. 44. – Pp. 301–307.

18. Лысак В.В., Желдакова Р.А., Фомина О.В. Микробиология. Практикум: пособие. – Минск: БГУ, 2015. – 115 с.

Сведения об авторах

Л.В. Маслиенко, зав. лаб., гл. науч. сотр., д-р биол. наук
Е.А. Заверюха, науч. сотр., аспирант
Л.А. Дейнега, науч. сотр., аспирант
А.В. Кузнецова, аналитик
Т.В. Мусынова, аналитик

УДК [57.083+579.64]:632.35
https://doi.org/10.25230/2412-608X-2025-4-204-117-124

Ирина Михайловна Игнатьева*
Елена Петровна Кононова

Всероссийский центр карантина растений
Россия, 140150, Московская обл., м.о. Раменский, пгт. Быково, ул. Пограничная, 32
*babiraignirmi@yandex.ru

Аннотация. В статье описаны разработка и апробация нового молекулярно-генетического метода для усовершенствования схемы диагностики возбудителя угловатой пятнистости фасолиPseudomonas savastanoi pv. phaseolicola – фитопатогенной бактерии масличных и зернобобовых культур. Предпосылкой усовершенствования методов выявления и идентификации бактерии стали сокращение расходов и сроков проведения исследования в связи с увеличением экспорта зерна сои и гороха в страны-импортеры, выставляющих требования к семенной продукции, свободной от возбудителя болезни. В ходе разработки нового подтверждающего теста на основе метода ПЦР в режиме реального времени подобраны четыре варианта праймерных систем (PspF1/PspR1/PspP1; PspF2/PspR2/PspP2; PspF3/PspR3/PspP3 и PspF4/PspR4/PspP4) участков консенсусных последовательностей плазмид P. savastanoi pv. phaseolicola NZ_JAANPZ010000001, NC_007274. Апробация нового метода проведена в лаборатории бактериологии и анализа ГМО Испытательного лабораторного центра Всероссийского центра карантина растений. Показатели аналитической чувствительности определены при помощи растительных экстрактов сои с добавлением суспензии P. savastanoi pv. phaseolicola. Наличие ДНК исследуемого патогена подтверждено для экстрактов, содержащих фитопатогенную бактерию в концентрации не менее 2 × 10² КОЕ/мл. Определение показателя аналитической специфичности проведено путем тестирования 153 штаммов для рекомендуемого ПЦР в режиме реального времени с праймерами PspF3, PspR3 и зондом PspP3, показатель аналитической специфичности составил 99,4 %. В результате исследования данный ПЦР-тест рекомендуется к внедрению в диагностическую схему в качестве подтверждающего молекулярно-генетического метода.

Ключевые слова: зерно сои, экспорт, карантинные перечни, угловатая пятнистость фасоли, подтверждающий молекулярно-генетический метод, ПЦР в режиме реального времени, Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola

Для цитирования: Игнатьева И.М., Кононо-
ва Е.П. Разработка и апробация нового способа идентификации Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola // Масличные культуры. 2025. Вып. 4 (204). С. 117–124.

Список источников

1. EPPO Global Database. Inter-African Phytosanitary Council (IAPSC). Categorization: [Электронный ресурс] // EPPO. – Режим доступа: https://gd.eppo.int/rppo/IAPSC/categorization (дата обращения 2025-10-10).

2. Кононова Е.П., Игнатьева И.М. Новые ПЦР-РВ для идентификации Pseudomonas savastanoi pv.phaseolicola // Фитосанитария. Карантин растений. – 2024. – № S4-1 (20). – С. 39.

3. Noble T.J., Williams B., Douglas C.A. [et al.]. Evaluating molecular diagnostic techniques for seed detection of Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola, causal agent of halo blight disease in mungbean (Vigna radiata) // Australasian Plant Pathology. – 2022. – Vol. 51. – No. 4. – P. 453–459. https://doi.org/10.1007/s13313-022-00876-7.

4. Кучеров А.А., Качарава Н.И., Корнеев К.А. [и др.]. Мировая продовольственная безопасность и международная торговля продукцией АПК 2023/24; в 2 т. – М., 2024. – 442 с.: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://agrimarkets.report/yearbook_20-23_2024 (дата обращения: 04.11.2024).

5. Seok Cho M., Jeon Y.H., Jung Kang M. [et al.]. Sensitive and specific detection of phaseolotoxigenic and nontoxigenic strains of Pseudomonas syringae pv. phaseolicola by TaqMan real-time PCR using site-specific recombinase gene sequences // Microbiological Research. – 2010. – Vol. 165. – No. 7. – Pp. 565–572. https://doi.org/
10.1016/j.micres.2009.11.001.

6. Kurowski C., Remeeus P.M. 7-023: Detection of Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola in Phaseolus vulgaris (bean) seed // International Rules for Seed Testing. Chapter 7: Validated Seed Health Testing Methods. – The Intern. Seed Testing Association, 2024: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.seedtest.org/api/
rm/T36N8P34DCRA359/7-023-detection-of-pseudomonas-savasta-noi-pv-phase-6.pdf.

7. Cooper B. The detriment of salicylic acid to the Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola proteome // Molecular Plant-Microbe Interac-tions^®. – 2022. – Vol. 35. – No. 9. – P. 814–824. https://doi.org/10.1094/MPMI-05-22-0104-R.

8. Arvizu‐Gómez J.L., Hernández‐Morales A., Llanos‐Vargas K.D. [et al.]. Influence of the low temperatures (18 °C) in the generation of intracellular oxidative stress in the phytopathogen bacterium Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola NPS3-121 // Journal of Phytopathology. – 2024. – Vol. 172. – No. 4. – Art. No. e13367. https://doi.org/
10.1111/jph.13367.10.1111/jph.13367.

9. Schaad N.W., Cheong S.S., Tamaki S. [et al.]. A combined biological and enzymatic amplification (BIO-PCR) technique to detect Pseudomonas syringae pv. phaseolicola in bean seed extracts // Phytopathology. – 1995. – Vol. 85. – No. 2. – Pp. 243–248. https://doi.org/10.1094/
Phyto-85-243.

10. Schaad N.W., Jones J.B., Chun W. Laboratory guide for identification of plant pathogenic bacteria. 3^rd ed. / The American Phytopathological Society. – St. Paul, Minnesota, 2001. – Pp. 218–235.

11. Audy P. A rapid and sensitive PCR-based assay for concurrent detection of bacteria causing common and halo blight in bean seed // Phytopathology. – 1996. – Vol. 86 (4). – Pp. 361–366.

12. Игнатьева И.М., Каримова Е.В., Приходько С.И. Опыт внедрения методов ПЦР-диагностики при выявлении и идентификации возбудителя угловатой пятнистости фасоли Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola (Burcholder) Gardan et al. // Защита растений от вредных организмов: мат-лы X-й междунар. науч.-практ. конф., посвящ. 100-летию Кубанского ГАУ, г. Краснодар, 21–25 июня 2021 г. – Краснодар: Кубанский ГАУ им. И.Т. Трубилина, 2021. – С. 159–161.

13. UniPro UGENE 50.0 [Электронный ресурс] // Компьютерная программа. – Режим доступа: https://www.top-4download.com/unipro-ugene-64bit/akwpdobd.html.

14. Basic Local Alignment Search Tool: [Электронный ресурс] // NCBI. – Компьютерная программа. – Режим доступа: https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi, свобод-ный (дата обращения 2025.10.10).

15. Доморацкая Д.А., Игнатьева И.М., Кононова Е.П. Разработка новых диагностических ПЦР-тестов для выявления возбудителя бактериального увядания Clavibacter insidiosus // Генетические и радиационные технологии в сельском хозяйстве: сб. докладов III-й междунар. молодеж. конф., г. Обнинск, 23–24 октября 2024 г. – Обнинск: НИЦ «Курчатовский институт» – ВНИИРАЭ, 2024. – С. 34–37.

16. ОФС.1.7.2.0008.15. Определение концентрации микробных клеток // Государственная фармакопея Российской Федерации: в 4 т. XIV изд-е. –М., 2018. – Т. 1.

17. Игнатьева И.М., Каримова Е.В. Определение унифицированного метода подготовки проб зерна гороха для идентификации комплекса бактериозов // Защита и карантин растений. – 2025. – № 1. – С. 26–32.

18. ГОСТ Р ИСО 5725-4-2002. Точность (правильность и прецизионность) методов и результатов измерений. Ч. 1. Основные положения и определения. – М.: Стандартинформ, 2009. – 24 с.

Сведения об авторах

И.М. Игнатьева, науч. сотр., зав. лаб.
Е.П. Кононова, агроном

УДК 632.913:635.35
https://doi.org/10.25230/2412-608X-2025-4-204-106-116

^1,2Калимат Нурудиновна Магомедова*
^1,3Галина Николаевна Бондаренко
^1,3Наталья Константиновна Шилкина

¹Всероссийский центр карантина растений
Россия, 140150, Московская обл., м.о. Раменский, пгт. Быково, ул. Пограничная, 32

²РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева
Россия, 127434, г. Москва, ул. Тимирязевская, 49

³Российский университет дружбы народов
Россия, 117198, г. Москва, ул. Миклухо-Маклая, 6
*kalimat_nur@mail.ru

Аннотация. В последние годы интерес к зернобобовым культурам значительно возрос, что связано с необходимостью ликвидации дефицита белка в рационе человека и кормовой базе сельскохозяйственных животных. Зернобобовые выращиваются во всех федеральных округах Российской Федерации. Кроме того, Россия является экспортером сои и других бобовых культур, поэтому экспортируемое зерно должно соответствовать фитосанитарным требованиям, в частности быть свободным от возбудителей вирусных болезней, передающихся с семенами. На территории Российской Федерации ежегодно увеличиваются посевные площади сои: в 2022 г. ее выращивали на 3,6 млн га, а в 2023 г. данный показатель достиг 3,7 млн га, что составляет + 6% прироста год к году. Основной фактор снижения урожайности зернобобовых культур – зараженность различными болезнями, в том числе вирусными. Растения из семейства Fabaceae поражаются более чем 50 видами вирусов. Среди вредоносных инфекций отмечен вирус южной мозаики бобов – Southern bean mosaic virus,или Sobemovirus (SBMV). В США, Мексике, Испании и Франции наблюдали потери урожаев растений-хозяев – сои, фасоли, маша и нута, которые приводили к снижению экономики. Вирус южной мозаики бобов (Southern bean mosaic virus, SBMV) – фитопатоген, поражающий бобовые культуры и представляющий потенциальную угрозу для сельского хозяйства России. В статье рассматриваются его распространение, пути передачи, биологические и генетические свойства, а также эпидемиологическая обстановка в странах, занимающихся выращиванием зернобобовых культур. Особое внимание уделено возможному экономическому ущербу от SBMV при возделывании сои в РФ, включая риски заражения через семенной материал. Обоснована необходимость усиления фитосанитарного контроля в условиях растущего экспорта сои. Работа подчёркивает актуальность изучения вируса SBMV с целью предупреждения его заноса и распространения в агроэкосистемах России.

Ключевые слова: зернобобовые культуры, соя, карантин растений, вирусы растений, вирус южной мозаики бобов, фитосанитарный риск

Для цитирования: Магомедова К.Н., Бондаренко Г.Н., Шилкина Н.К. Вирус южной мозаики бобов: современное состояние исследований в мире и потенциальная вредоносность для зернобобовых культур в РФ// Масличные культуры. 2025. Вып. 4 (204). С. 106–116.

Список источников

1. Посевные площади и структура посевных площадей в хозяйствах всех категорий в РФ в 2023 г. / Zerno.ru: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.zerno.ru/node/25591 (дата обращения: 05.07.2025).

2. Details of DPV Southern bean mosaic virus / DPVweb: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.dpvweb.net/
dpv/showdpv/?dpvno=274 (дата обращения: 26.06.2025).

3. Tamm T., Truve E. Sobemoviruses // J. Virol. –  2000. – Vol. 74. –  No. 14. –  Pp. 6231–6241.

4. Sobemovirus SBMV (SBMV00). World distribution / EPPO Global Database: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://gd.eppo.int/taxon/SBMV00/distribution (дата обращения: 25.06.2025).

5. Segundo E. [et al.]. First Report of Southern bean mosaic virus Infecting French Bean in Morocco // Plant Disease. – 2004. – Vol. 88 (10). – Art. No. 1162.

6. Song S.M., Zhang C.L., Que X.F. [et al.]. A preliminary study on monoclonal antibodies to southern bean mosaic virus // Chinese Journal of Virology. – 1991. – Vol. 7 (2). – Pp. 176–179.

7. Verhoeven J.Th.J., Roenhorst J.W., Lesemann D.E., Emilson Martins de Oliveira Segundo [et al.]. Southern bean mosaic virus the causal agent of a new disease of Phaseolus vulgaris beans in Spain // European Journal of Plant Pathology. – 2003. – Vol. 109 (9). – Pp. 935–941. https://doi.org/
10.1023/B:EJPP.0000003673.10046.2f.

8. Rabson M. Mulenga, Douglas W. Miano. First report of Southern bean mosaic virus infecting common bean in Zambia // Plant Disease. –  2020. –  Vol. 104. – No. 6. – P. 1880. https://doi.org/10.1094/PDIS-11-19-2390-PDN.

9. Zink M., Grubmüller H. Primary changes of the mechanical properties of Southern bean mosaic virus upon calcium removal // Biophys J. – 2010. – Vol. 98. – No. 4. – Pp. 687–695.

10. Genus: Sobemovirus / International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV): [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://ictv.global/report/chapter/solemoviridae/solemoviridae/sobemovirus (дата обращения: 05.07.2025).

11. Ghafari M., Sõmera M. [et al.]. Revisiting the origins of the Sobemovirus genus: A case for ancient origins of plant viruses // PLoS Pathog. – 2024. – Vol. 20. – No. 1. – e1011911. https://doi.org/10.1371/jounal.
ppat.1011911.

12. Bird J., Sánchez J., Rodríguez R.L., Cortés-Monllor A., Kaiser W. A mosaic of beans (Phaseolus vulgaris L.) caused by a strain of Common cucumber mosaic virus // The Journal of Agriculture of the University of Puerto Rico. – 1974. – Vol. 58. – No. 2. https://doi.org/10.46429/jaupr.v58i2.10674.

13. Southern bean mosaic virus – an overview / ScienceDirect Topics: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.sciencedirect.com/topics/agricultural-and-biolo-gical-sciences/southern-bean-mosaic-virus (дата обращения: 12.07.2025).

14. Мировое производство сои растет как на бобах / OleoScope: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://oleo-scope.com/analytics/mirovoe-proizvodstvo-soi-rastet-kak-na-bobah/ (дата обращения: 05.07.2025).

15. Анализ: Посевные площади под соей увеличились до 3,6 млн га в 2023 году / АгроXXI: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.agroxxi.ru/agroecono-mics/analiz-posevnye-ploschadi-podsoei-uv-elichilis-do-3-6-mln-ga-v-2023-godu.html (дата обращения: 03.07.2025).

16. Sobemovirus SBMV (SBMV00). Categorization / EPPO Global Database: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://gd.eppo.int/taxon/SBMV00/categorization (дата обращения: 01.06.2025).

17. Г.Н. Бондаренко, К.Н. Магомедова, Н.К. Шилкина. Разработка тест-системы ПЦР в реальном времени для идентификации вируса южной мозаики бобов // BIOAsia-Altai, 2025. – Т. 4. – № 1 – С. 274–277.

Сведения об авторах

К.Н. Магомедова, агроном
Г.Н. Бондаренко, начальник ИЛЦ, ст. науч. сотр., канд. биол. наук
Н.К. Шилкина, зав. лаб., мл. науч. сотр.

УДК 633.854.78:581.2:582.281.144
https://doi.org/10.25230/2412-608X-2025-4-204-99-105

Мария Вячеславовна Ивебор*
Татьяна Сергеевна Антонова
Нина Михайловна Арасланова
Светлана Леонидовна Саукова

ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК
Россия, 350038, г. Краснодар, ул. им. Филатова, д. 17
*maria-iwebor@mail.ru

Аннотация. Ложная мучнистая роса, вызываемая оомицетом Plasmopara halstedii (Farl.) Berl. & de Toni, – одна из наиболее вредоносных болезней подсолнечника (Helianthus annuus L.). Эффективность контроля заболевания основана на генетической устойчивости возделываемого подсолнечника, однако высокая изменчивость патогена приводит к появлению новых вирулентных патотипов. Цель данной публикации – сообщить о новом для Российской Федерации патотипе 737. Исследования проводили в 2021–2025 гг. в южных регионах России (Краснодарский и Ставропольский край, Ростовская область). Определяли вирулентность P. halstedii с использованием стандартного международного набора из девяти линий-дифференциаторов подсолнечника. В 2021 г. был впервые в РФ обнаружен патотип 737 в Краснодарском крае и Ростовской области. Его вирулентность подтверждена с использованием монозооспорангиевых изолятов. Новый патотип был обнаружен на иностранных гибридах подсолнечника с геном устойчивости Pl₆, что указывает на его возможную интродукцию с импортным семенным материалом. В 2022 г. был найден один изолят этого патотипа в Краснодарском крае и далее (2023–2025 гг.) в региональной популяции он не был обнаружен. Патотип 737 обладает широким спектром вирулентности, преодолевая устойчивость восьми из девяти линий стандартного набора (кроме линии 803-1); линии RHA-340 и RHA-419 он не поражает. Все изоляты патотипа 737 показали чувствительность к фунгициду мефеноксам. Особенностью данного патотипа является его высокая агрессивность, которая, вызывая некрозы и мацерацию тканей растения-хозяина, ограничивает образование бесполого спороношения, обеспечивающего быстрое распространение и накопление инфекции. Предполагается, что, несмотря на преодоление действия многих генов устойчивости подсолнечника, эпидемиологический потенциал патотипа 737 в местных условиях будет невысок из-за нарушения репродуктивного цикла; однако его ооспоры могут сохраняться в почве, обуславливая возможность периодических вспышек вызываемого им заболевания.

Ключевые слова: Plasmopara halstedii, Helianthus annuus, патотип, раса, вирулентность, агрессивность, мефеноксам

Благодарность: авторы выражают благодарность коллективу работников ВНИИМК за помощь в сборе образцов подсолнечника, пораженных ложной мучнистой росой.

Для цитирования: Ивебор М.В., Антонова Т.С., Арасланова Н.М., Саукова С.Л. Первое сообщение об обнаружении в Российской Федерации патотипа 737 возбудителя ложной мучнистой росы подсолнечника// Масличные культуры. 2025. Вып. 4 (204). С. 99–105.

Список источников

1. Tourvieille de Labrouhe D., Gulya T.J., Masirevic S., Penaud A., Rashid K., Viranyi F. New nomenclature of race of Plasmopara halstedii (sunflower downy mildew) // Proc. of 15th Intern. Sunfl. Conf., June 12–15, 2000, Toulouse, France. – 2000. –
Vol. 2. – Pp. 161–166.

2. Viranyi F., Gulya T.J., Tourvieille de Labrouhe D. Recent changes in the pathogenic variability of Plasmopara halstedii (sunflower downy mildew) populations from different continents // Helia. – 2015. – Vol. 38. – Pp. 149–162. http://doi.org/10.1515/helia-2015-0009.

3. Spring O. Spreading and global pathogenic diversity of sunflower downy mildew – Review // Plant Protect. Sci. – 2019. – Vol. 55. – Pp. 149–158.  http://doi.org/10.17221/32/201-9-PPS.

4. Gulya T.J. Distribution Plasmopara halstedii races from sunflower around the world // Proc. of the 2nd Intern. Downy Mildews Symposium. Advances in downy mildew research. – 2007. – No 3. – Pp. 121–134.

5. Pecrix Y., Penouilh-Suzette C., Muños S., Vear F., Godiard L. Ten broad spectrum resistances to downy mildew physically mapped on the sunflower genome // Front Plant Sci. – 2018. – Vol. 4 (9). – P. 1780. http://doi.org/10.3389/fpls.2018.01780.

6. Gontcharov S., Goloschapova N. Evaluation of horizontal resistance of sunflower (Helianthus annuus L.) to downy mildew (Plasmopara halstedii) // Oilseeds and Fats, Crops and Lipids. – 2021. – Vol. 28. – Art. No. 2021047. http://doi.org/10.1051/
ocl/202-1047.

7. Qi L.L, Ma G.J., Li X.H., Seiler G.J.  Diversification of the downy mildew resistance gene pool by introgression of a new gene, Pl₃₅, from wild Helianthus argophyllus into oilseed and confection sunflowers (Helianthus annuus L.) // Theor. Appl. Genet. – 2019. – Vol. 132. – P. 2553–2565.  http://doi.org/10.-1007/s00122-019-03370-9.

8. Ивебор М.В., Антонова Т.С., Арасланова Н.М., Саукова С.Л., Питинова Ю.В., Елисеева К.К. Состояние популяции возбудителя ложной мучнистой росы подсолнечника в регионах Российской Федерации // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. – 2022. – № 23 (1). – С. 90–97. http://doi.org/
10.30766/2072-9081.2022.-23.-1.90-97.

9. Ахтулова Е.М. Физиологические расы гриба Plasmopara halstedii в Белгород­ской области // Науч.-информ. бюл. ВИР. – СПб., 2001. – № 240. – С. 70–71.

10. Новотельнова Н.С. Ложная мучнистая роса подсолнечника. – М.-Л.: Наука, 1966. – 150 с.

11. Sakr N., Ducher M., Tourvieille J., Walser P., Tourvieille de Labrouhe D. A new method to obtain monozoosporangial isolates of sunflower downy mildew (Plasmopara halstedii) // Cryptogamie mycologie. – 2007. – Vol. 28 (2). – Pp. 123–131.

12. Панченко А.Я. Ускоренный метод оценки подсолнечника на устойчивость к ложной мучнистой росе // Селекция и семеноводство. – ВНИИМК, 1965. – С. 52–54.

13. Petrova M. Distribution and race composition of downy mildew on sunflower (Plasmopara halstedii) in Bulgaria during 2018–2021 // Field Crops Studies. – 2025. – Vol. XV (1). – Pp. 5–12. – Режим доступа: http://fcs.-dai-gt.org/bg/pdf/full-text_XV_1_
1.pdf/ (дата обращения: 03.10.2025).

14. Van der Plank J.E. Disease resistance in plants. – New York: Academic Press, 1968. – 206 p.

15. Sacristán S., García-Arenal F. The evolution of virulence and pathogenicity in plant pathogen populations // Molecular Plant Pathology. – 2008. – Vol.  9. – Pp. 369–384. http://doi.org/10.1111/
j.1364-3703.2007.00-460.x.

16. Sackston W.E. On a treadmill: breeding sunflowers for resistance to disease // Annual Review of Phytopathology. – 1992. – Vol. 30 (1). – Pp. 529–551. http://doi.org/10.1146/annurev.py.30.090192.-002525.

Сведения об авторах

М.В. Ивебор, вед. науч. сотр., канд. с.-х. наук
Т.С. Антонова, гл. науч. сотр., д-р биол. наук
Н.М. Арасланова, вед. науч. сотр., канд. с.-х. наук
С.Л. Саукова, ст. науч. сотр., канд. биол. наук