УДК 633.853.494:632.937
https://doi.org/10.25230/2412-608X-2025-4-204-125-133

Любовь Васильевна Маслиенко*
Евгения Алексеевна Заверюха
Любовь Анатольевна Дейнега
Анастасия Владиславовна Кузнецова
Татьяна Вячеславовна Мусынова

ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК
Россия, 350038, г. Краснодар, ул. им. Филатова, д. 17
*biometod@vniimk.ru

Аннотация. С целью создания экологически безопасных микробиологических препаратов был проведен первичный скрининг бактериальных штаммов из рабочей коллекции лаборатории биометода ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК к возбудителю альтернариоза рапса озимого Alternaria brassicicola (Schwein.) Wiltshire методом двойных, или встречных, культур. Среди бактерий рода Bacillus
23 штамма обладали только антибиотической активностью, образуя стерильную зону от 0,5 до 9,5 мм на двух питательных средах: картофельно-сахарозном агаре (КСА) и Тайлона-3. Максимальная стерильная зона установлена у пяти штаммов: P-9 B. polymyxa (9,5 мм), 5Б-1 B. subtilis (8,0 мм), Б (2-1) B. licheniformis (7,5 мм), K 1-1 B. subtilis (7,5 мм), Fz 9 Bacillus sp. (7,0 мм). Все девять штаммов бактерий рода Pseudomonas обладали антагонистической активностью к возбудителю альтернариоза также с одним типом механизма действия – антибиозом (0,5–10,5 мм). Наибольшая стерильная зона на средах КСА и Кинга В отмечена у штамма 12-2 Pseudomonas sp. (3,0 и 10,5 мм).

Ключевые слова: первичный скрининг, бактериальные штаммы антагонисты, микробиологический метод, альтернариоз рапса озимого, черная пятнистость, Alternaria brassicicola

Для цитирования: Маслиенко Л.В., Заверюха Е.А., Дейнега Л.А., Кузнецова А.В., Мусынова Т.В. Первичный скрининг коллекционных бактериальных штаммов к возбудителю альтернариоза рапса озимого Alternaria brassicicola in vitro // Масличные культуры. 2025. Вып. 4 (204). С. 125–133.

Список источников

1. Pedras M.S.C. [et al.].The phytopathogenic fungus Alternaria brassicicola: phytotoxin production and phytoalexin elicitation // Phytochemistry. – 2009. – Vol. 70. – No. 3. – Pp. 394–402.

2. Пивень В.Т., Сердюк О.А. Фитосанитарный мониторинг болезней рапса // Масличные культуры. Науч.-тех. бюл. ВНИИМК. – 2011. – № 2 (148–149). – С. 162–167.

3. Chavda H., Thesiya M. Diseases of rapeseed and mustard crop // Diseases of Field Crops and their Management. – Astral International Pvt. Ltd., 2024. – 346 p.

4. Ганнибал Ф.Б., Гасич Е.Л. Возбудители альтернариоза растений семейства крестоцветные в России: видовой состав, география и экология // Микология и фитопатология. – 2009. – Т. 43. – № 5. – С. 79–88.

5. Ашмарина Л.Ф., Коняева Н.М., Коробейников А.С. Пораженность различных сортов рапса наиболее распространенными в Западной Сибири заболеваниями // Вестник Новосибирского ГАУ. – 2016. – № 1. – С. 28–34.

6. Сердюк О.А., Трубина В.С., Горлова Л.А. Вредоносность болезней рапса и горчицы сарептской в условиях центральной зоны Краснодарского края // Научные приоритеты адаптив-ной интенсификации сельскохозяйственного производства: мат-лы Междунар. науч.-практич. конф. с элементами школы молодых ученых, г. Краснодар, 03–05 июля 2019 г. – Краснодар: Издательство «ЭДВИ», 2019. – С. 172–173.

7. Лешкевич Н.В. Патогенный комплекс грибов, паразитирующих на озимом рапсе (лит. обзор) // Защита растений. – 2022. – № 42. –
С. 116–134.

8. Fung F., Tappen D., Wood G. Alternaria – associated asthma // Appl. Occup. Environ. Hygiene. – 2000. – No. 15. – Pp. 924–927.

9. Mridna M.A.U., Wheeler B.E.J. In vitro effects of temperature and wet periods on infection of oilseed rape by Alternaria brassicae // Plant Pathology. – 1993. – No. 42. – Pp. 671–675.

10. Картамышева Е.В. [и др.]. Совершенствование технологии возделывания озимых рапса (Brassica napus L.) и рыжика (Camelina sativa L.) Crantz) на семена в Приазовской зоне Ростовской области // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского ГАУ. – 2018. – № 139. – С. 17–37.

11. Пивень В.Т., Горлов С.Л., Семеренко С.А. Основные элементы интегрированной системы защиты рапса от вредителей и болезней в Северо-Кавказском регионе // Земледелие. – 2009. – № 2. – С. 36–37.

12. Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации / Министерство сельского хозяйства Российской Федерации. – М., 2025. – 852 с.

13. Maslienko L. [et al.].Secondary screening of strains of antagonists to a Phoma pathogen on sunflower // BIO Web of Conferences. – EDP Sciences, 2020. – Vol. 21. – Art. No. 00017.

14. Дейнега Л.А., Маслиенко Л.В., Ефимцева Е.А. Способность перспективных штаммов антагонистов возбудителя сухой гнили Rhizopus oryzae колонизировать растущий корень подсолнечника на фоне искусственного заражения проростков в лабораторных условиях // Защита растений от вредных организмов: мат-лы XI междунар. науч.-практ. конф., 19–23 июня 2023 г. – Вып. 11. – С. 117–119.

15. Егоров Н.С. Выделение микробов антагонистов и биологические методы учета их антибиотической активности. – М., 1957. – 78 с.

16. Егоров Н.С. Основы учения об антибиотиках. – М.: Наука, 2004. – 528 с.

17. King E.D., Ward M.K., Raney D.E. Two simple media for the demonstration of pyocyanin and fluorescin // Journal of Laboratory and Clinical Medicine. – 1954. – Vol. 44. – Pp. 301–307.

18. Лысак В.В., Желдакова Р.А., Фомина О.В. Микробиология. Практикум: пособие. – Минск: БГУ, 2015. – 115 с.

Сведения об авторах

Л.В. Маслиенко, зав. лаб., гл. науч. сотр., д-р биол. наук
Е.А. Заверюха, науч. сотр., аспирант
Л.А. Дейнега, науч. сотр., аспирант
А.В. Кузнецова, аналитик
Т.В. Мусынова, аналитик