УДК 633.853.494:632.937
https://doi.org/10.25230/2412-608X-2025-3-203-96-103
Любовь Васильевна Маслиенко*
Любовь Анатольевна Дейнега
Евгения Алексеевна Заверюха
Анастасия Владиславовна Кузнецова
ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК
Россия, 350038, г. Краснодар, ул. им. Филатова, д. 17
*biometod@vniimk.ru
Аннотация. В условиях центральной зоны Краснодарского края и в южных областях Нечерноземья одной из наиболее вредоносных болезней рапса озимого является фомоз (возбудитель болезни Leptosphaeria maculans (Desm.) Ces. et De Not, конидиальная стадия Phoma lingam (Tode) Desm.). Одним из этапов разработанной в лаборатории биометода агротехнологического отдела ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК концепции целенаправленного создания эффективных микробиологических препаратов является ступенчатый скрининг коллекционных штаммов антагонистов против возбудителя болезни на фоне искусственного заражения. Первый этап вторичного скрининга выделенных в первичном скрининге перспективных штаммов антагонистов проводили на фоне искусственного заражения семян рапса озимого возбудителем фомоза Phoma lingam во влажной камере in vitro. На жестком фоне искусственного заражения возбудителем фомоза (80,0 %) выделено: пять грибных штаммов (Т-4 Trichoderma sp., Pbc-1 Penicillium brevi-compactum, И-3 Basidiomycota, Pp-1 Penicillium purpurescens, Хk-3 Chaetomium globosum), проявивших максимальную биологическую эффективность – 75,0–
87,5 %, семь бактериальных штаммов из рода Bacillus (Far 8, 11-2, D 1-3, K1-2, 11-1 Bacillus sp., Б-5 B. licheniformis и 5Б-1 B. subtilis), также имевших максимальную эффективность, – 68,8–75,0 %, и два штамма из рода Pseudomonas (14-3 P. chlororaphis и 13-2 Pseudomonas sp.) с эффективностью 62,5 %. Выделенные штаммы в дальнейшем будут испытаны в следующем этапе вторичного скрининга на фоне искусственного заражения возбудителем болезни в лабораторных условиях в грунте.
Ключевые слова: рапс озимый, фомоз, Phoma lingam, вторичный скрининг, штаммы антагонисты, искусственное заражение, влажная камера, биологическая эффективность
Для цитирования: Маслиенко Л.В., Дейнега Л.А., Заверюха Е.А., Кузнецова А.В. Эффективность перспективных штаммов антагонистов против возбудителя фомоза рапса озимого на фоне искусственного заражения во влажной камере in vitro // Масличные культуры. 2025. Вып. 3 (203). С. 96–103.
Список источников
1. Index Fungorum Databases: [Электронный ресурс]. ‒ Режим доступа: https://www.indexfungorum.org/names/Nam-esRecord.asp?Record-ID=157743 (дата обращения: 21.08.2025).
2. Пивень В.Т., Сердюк О.А. Фитосанитарный мониторинг болезней рапса // Масличные культуры. Науч.-тех. бюл. ВНИИМК. – 2011. – Вып. 2 (148–149). – С. 162–166.
3. Бочкарев Н.И., Пивень В.Т., Тишков Н.М. [и др.]. Защита рапса // Защита и карантин растений. – 2017. – № S1. – С. 37–76.
4. Сердюк О.А., Трубина В.С., Горлова Л.А. Влияние внутренней инфекции на всхожесть и масличность семян масличных культур семейства капустные // Масличные культуры. – 2019. – Вып. 3 (179). – С. 119–123. https://doi.org/10.25230/2412-608X-2019-3-179-119-123.
5. Гасич Е.Д. Фомоз рапса (обзор литературы) // Вестник защиты растений. – 2004. – № 1. – С. 11–24.
6. Gomzhina M.M., Gasich E.L. Plenodomus species infecting oilseed rape in Russia // Plant Protection News. – 2022. – Vol. 105 (3). – P. 135–147. https://doi.org/10.31993/2308-6459-2022-105-3-15425.
7. Костин Н.К., Кузнецова А.А., Дудченко И.П. [и др.]. Видовой состав микромицетов, ассоциированных с растениями рапса озимого некоторых регионов России // Сб. мат-лов конф. «Генетические технологии в микробиологии и микробное разнообразие», Пущино, 06–08 декабря 2022 г. – М.: ГЕОС, 2022. – С. 56–59.
8. Сердюк О.А. Сравнительная оценка эффективности препаратов из группы триазолов против склеротиниоза и фомоза на рапсе озимом // Защита и карантин растений. – 2012. – № 5. – С. 21–22.
9. Девяткина Т.Ф., Чигорин С.С., Силаев А.И. [и др.]. Оценка эффективности фунгицидов в сдерживании альтернариоза и фомоза на яровом рапсе // Аграрный научный журнал. – 2024. – № 5. – С. 19–27. https://doi.org/10.28983/asj.y2024i5pp19-27.
10. Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории российской федерации / Министерство сельского хозяйства Российской Федерации (Минсельхоз России). – М., 2025. – 852 с.
11. Маслиенко Л.В. Лаборатория биологических средств защиты растений (вчера, сегодня, завтра) // История научных исследований во ВНИИМКе за 90 лет. – Краснодар, 2002. – С. 191–197.
12. Маслиенко Л.В. Обоснование и разработка микробиологического метода борьбы с болезнями подсолнечника: автореф. дис. … д-ра биол. наук / Любовь Васильевна Маслиенко. – Краснодар, 2005. – 48 с.
13. Рудаков О.Л. Микофильные грибы, их биология и практическое значение. – М.: Наука, 1981. – 160 с.
14. Егоров Н.С. Основы учения об антибиотиках. – М.: Наука, 2004. – 528 с.
15. King E.D., Ward M.K. and Raney D.E. Two simple media for the demonstration of pyocyanin and fluorescing // Journal of Laboratory and Clinical Medicine. – 1954. – V. 44. – Pp. 301–307.
16. Зайчук В.Ф., Коновалов Н.Г., Калюжная Г.А., Полянская О.Ф. Метод оценки устойчивости рапса и горчицы к фузариозу // Науч.-тех. бюл. ВНИИМК. – 1990. – Вып. 4 (111). – С. 49–52.
Сведения об авторах
Л.В. Маслиенко, зав. лаб., гл. науч. сотр., д-р биол. наук
Л.А. Дейнега, науч. сотр., аспирант
Е.А. Заверюха, науч. сотр., аспирант
А.В. Кузнецова, аналитик