Рубрика: Масличные культуры. Выпуск №1 (193) 2023

Перекрёстная гербицидоустойчивость к трибенурон-метилу и имидазолинонам у подсолнечника

УДК 633.854.78:575
DOI: 10.25230/2412-608Х-2023-1-193-14-18

Яков Николаевич Демурин
Наталья Владимировна Магомедова
Анастасия Александровна Пихтярёва
Андрей Александрович Широких

ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК
Россия, 350038, г. Краснодар, ул. им. Филатова, д. 17
Тел.: (861) 274-55-94
genetic@vniimk.ru

Аннотация. Изучение перекрёстной устойчивости к гербицидам проводили в полевых условиях в 2021 и 2022 гг. Изучали гибрид Сурус и крупноплодный сорт Консул, гомозиготные по гену устойчивости к трибенурон-метилу Sur, а также крупноплодный сорт Аладдин, гомозиготный по гену устойчивости к имидазолинонам Imr. Крупноплодный сорт Караван был стандартом восприимчивости к гербицидам. Использовали гербициды Экспресс (трибенурон-метил) и Евро-Лайтнинг (имазамокс, имазапир). Обработку растений гербицидом проводили в фазе шести настоящих листьев с применением ранцевого опрыскивателя. Оценку степени повреждения растений выполняли на 10-й день после обработки по 9-балльной шкале фитотоксичности. Наличие восприимчивых, но непогибших растений с морфозами листьев в количестве до 16 % при обработке гербицидом Евро-Лайтнинг сульфонилмо-чевиноустойчивых гибрида Сурус и сорта Консул указывает на их частичную перекрёстную устойчивость к имидазолинонам. Наличие восприимчивых, но непогибших растений с морфозами листьев в количестве до 35 % при обработке гербицидом Экспресс имидазолиноноустойчивого сорта Аладдин указывает на его частичную перекрёстную устойчивость к трибенурон-метилу. Морфологические аномалии в росте и развитии восприимчивых, но непогибших растений, относящихся к промежуточным баллам 4–6 шкалы фитотоксичности, делают биологически выжившие растения бесперспективными с селекционной точки зрения.

Ключевые слова: гибрид, сорт, крупноплодность, устойчивость к гербициду, шкала фитотоксичности

Для цитирования: Демурин Я.Н., Магомедова Н.В., Пихтярёва А.А., Широких А.А. Перекрёстная гербицидоустойчивость к трибенурон-метилу и имидазолинонам у подсолнечника // Масличные культуры. 2023. Вып. 1 (193). С. 14–18.

Благодарности. Авторы признательны Децыне А.А., кандидату сельскохозяйственных наук, заведующему лабораторией селекции сортов   подсолнечника ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК за      предоставленные для исследования семена крупноплодных сортов подсолнечника.

Исследование выполнено при финансовой поддержке гранта «Разработка методов контролируемой активации мобильных элементов генома для расширения генетического разнообразия и улучшения технологических характеристик селекционных линий подсолнечника» по Соглашению № 22-64-00076 от 08.08.2022 г. с Российским научным фондом.

Список литературы

1. Miller J.F., Al-Khatib K. Registration of two oilseed sunflower genetic stocks, SURES-1 and SURES-2, resistant to tribenuron herbicide // Crop Science. – 2004. – V. 44. – P. 1037–1038.

2. Kolkman J.M., Slabaugh M.B., Bruniard J.M. [et al.]. Acetohydroxyacid synthase mutations conferring resistance to imidazolinone or sulfonylurea herbicides in sunflower // Theoretical and Applied Genetics. – 2004. – V. 109. – P. 1147–1159.

3. Sala C.F., Bulos M., Altieri E., Ramos M.L. Genetics and breeding of herbicide tolerance in sunflower // Proc. 18-th Int. Sunflower Conf., Mar del Plata, Argentina, 2012. – P. 75–81.

4. Шкорич Д. Селекция подсолнечника / В кн: Генетика и селекция подсолнечника: международная монография. Сербская академия наук и искусств, Ассоциация «Селекция и семеноводство подсолнечника». – Харьков, 2015. – С. 165–319.

5. Тронин А.С. Наследование и селекционное использование устойчивости к сульфонилмочевиновым гербицидам у подсолнечника: автореф. дис. … канд. биол. наук. – Краснодар: КубГАУ, 2017. – 24 с.

6. Демурин Я.Н., Пихтярёва А.А., Тронин А.С. Передача гена устойчивости к трибенурон-метилу в селекционный материал подсолнечника ВНИИМК // Масличные культуры. Науч.-тех. бюл. ВНИИМК. – 2013. – Вып. 1 (153–154). – С. 16–20.

7. Sala C.A., Bulos M. Inheritance and molecular characterization of broad range tolerance to herbicides targeting acetohydroxyacid synthase in sunflower // Theoretical and Applied Genetics. – 2012. – V. 124. – P. 355–364.

8. Демурин Я.Н., Тронин А.С., Пикалова Н.А. Шкала фитотоксичности ALS-ингибирующих гербицидов у подсолнечника // Масличные культуры. Науч.-тех. бюл. ВНИИМК. – 2013. – Вып. 2 (155–156). – С. 24–27.

Сведения об авторах

Я.Н. Демурин, зав. лаб., гл. науч. сотр., д-р биол. наук, профессор
Н.В. Магомедова, аспирант
А.А. Пихтярёва, вед. науч. сотр., канд. биол. наук
А.А. Широких, аналитик

Разработка ДНК-маркеров признака устойчивости подсолнечника к расе G заразихи (Orobanche cumana Wallr.)

УДК 633.854.78:575:632.9
DOI: 10.25230/2412-608Х-2023-1-193-3-13

Дмитрий Леонидович Савиченко
Саида Заурбиевна Гучетль
Елизавета Дмитриевна Логинова

ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК
Россия, 350038, г. Краснодар, ул. им. Филатова, д. 17
d_savichenko@mail.ru

Аннотация. Заразиха кумская (Orobanche cumana Wallr.) – облигатный паразит, способный вызвать значительное снижение урожая подсолнечника. Наиболее распространенной и вирулентной расой заразихи в Российской Федерации является раса G. Экологичным и экономически выгодным способом борьбы с ней является выращивание генетически устойчивых сортов и гибридов подсолнечника. Применение ДНК-маркеров при отборе устойчивых растений значительно повышает эффективность селекционного процесса. Для маркирования устойчивости подсолнечника к расе G заразихи с помощью биоинформатических подходов были разработаны новые ДНК-маркеры – четыре SCAR (sequence characterized amplified region) и 10 SSR (simple sequence repeat). Маркеры были проверены на 20 линиях и гибридах подсолнечника. По результатам проверки были поэтапно исключены из исследования все SSR- и два SCAR-маркера. SCAR-маркер RORS1 характеризовался наличием амплифицированного фрагмента ДНК длиной ≈ 168 п.н. и показал ассоциацию с признаком устойчивости, а SORS1 с длиной фрагмента   ≈ 322 п.н. – связь с восприимчивым фенотипом. Из них была составлена маркерная система для мультиплексной ПЦР, которая позволила различать устойчивые и восприимчивые линии и гибриды, кроме линии ВК678 и гибридов F1, полученных с использованием ее в качестве родительской. Для устранения недостатков маркерной системы были сконструированы семь SCAR-маркеров, аналогичных SORS1. По результатам оценки был отобран маркер SORS9, характеризующийся наличием амплифицированного фрагмента ДНК длиной ≈ 217 п.н. у восприимчивых генотипов. Новая система маркеров RORS1/SORS9 для мультиплексной ПЦР была валидирована на 70 линиях и гибридах подсолнечника. Восприимчивые линии и гибриды характеризовались амплификацией только маркера SORS9, устойчивые линии – только маркера RORS1, а устойчивые гибриды – обоих маркеров. Разработанная маркерная система позволила отличить все восприимчивые линии и гибриды от устойчивых генотипов подсолнечника.

Ключевые слова: подсолнечник, заразиха кумская, ДНК-маркер, маркер-вспомогательная селекция, устойчивость

Для цитирования: Савиченко Д.Л., Гучетль С.З., Логинова Е.Д. Разработка ДНК-маркеров  признака устойчивости подсолнечника к расе G заразихи (Orobanche cumana Wallr.) // Масличные культуры. Вып. 1 (193). С. 3–13.

Список литературы

1. Staughton J. The amazing benefits of sunflower oil // Oilseeds Focus. – 2019. – V. 5. – I. 2. – P. 40–41.

2. Cvejić S., Radanović A., Dedić B., Jocković M., Jocić S., Miladinović D. Genetic and genomic tools in sunflower breeding for broomrape resistance // Genes. – 2020. – Vol. 11. – No. 2. – P. 152.

3. Антонова Т.С., Арасланова Н.М., Саукова С.Л., Ивебор М.В. К вопросу о засоренности полей в регионах РФ семенами заразихи (Orobanche cumana Wallr.) – облигатного паразита подсолнечника // Вестник российской сельскохозяйственной науки. – 2022. – № 4. – С. 29–32. DOI: 10.31857/2500-2082/2022/4/29-32.

4. Лукомец В.М., Трунова М.В., Демурин Я.Н. Современные тренды селекционно-генетического улучшения сортов и гибридов подсолнечника во ВНИИМК // Вавиловский журнал генетики и селекции. – 2021. – Т. 25. – № 4. – С. 388–393.

5. Антонова Т.С., Стрельников Е.А., Арасланова Н.М., Гучетль С.З., Челюстникова Т.А. Отбор на устойчивость к расе G заразихи из расщепляющихся популяций подсолнечника в искусственных условиях выращивания // Масличные культуры. Науч.-тех. бюл. ВНИИМК. – 2017. – Вып. 3 (171). – С. 18–22.

6. Davar R., Darvishzadeh R., Ahmad M. [et al.]. QTL mapping of partial resistance to basal stem rot in sunflower using recombinant inbred lines // Phytopathol. Mediterr. – 2010. – V. 49. – I. 3. – P. 330–341.

7. Dimitrijevic A., Horn R. Sunflower hybrid breeding: from markers to genomic selection // Front Plant Sci. – 2018. – V. 8. – P. 2238. DOI: 10.3389/fpls.2017.02238.

8. Dimitrijević A., Imerovski I., Miladinović D. [et al.]. Oleic acid variation and marker-assisted detection of Pervenets mutation in high-and low-oleic sunflower cross // Crop Breed. Appl. Biotechnol. – 2017. – V. 17. – I. 3. – P. 235–241. DOI: 10.1590/1984-70332017v17n3a36.

9. Rauf S., Warburton M., Naeem A., Kainat W. Validated markers for sunflower (Helianthus annuus L.) breeding // OCL. – 2020. – V. 27. –         P. 47.

10. Tang S., Heesacker A., Kishore V.K., Fernandez A., Sadik E.S., Cole G., Knapp S.J. Genetic mapping of the Or5 gene for resistance to Orobanche race E in sunflower // Crop Science. – 2003. – Vol. 43. – No. 3. – P. 1021–1028.

11. Imerovski I., Dimitrijević A., Miladinovic D., Dedić B., Jocić S., Tubić N.K., Cvejić S. Mapping of a new gene for resistance to broomrape races higher than F // Euphytica. – 2016. – Vol. 209. – P. 281–289.

12. Imerovski I. Dedić B., Cvejić S., Miladinović D., Jocić S., Owens G.L., Rieseberg L.H. BSA-seq mapping reveals major QTL for broomrape resistance in four sunflower lines // Molecular Breeding. – 2019. – Vol. 39. – P. 1–15.

13. Duriez P., Vautrin S., Auriac M.C., Bazerque J., Boniface M.C., Callot C. [et al.]. A receptor-like kinase enhances sunflower resistance to Orobanche cumana // Nature Plants. – 2019. – Vol. 5. – No. 12. – P. 1211–1215.

14. Martín‐Sanz A. Pérez‐Vich B., Rueda S., Fernández‐Martínez J.M., Velasco L. Characte-rization of post‐haustorial resistance to sunflower broomrape // Crop Science. – 2020. – Vol. 60. – No. 3. – P. 1188–1198. DOI: 10.1002/ csc2.20002.

15. Fernández-Aparicio M., Del Moral L., Muños S., Velasco L., Pérez-Vich B. Genetic and physiological characterization of sunflower resistance provided by the wild-derived OrDeb2 gene against highly virulent races of Orobanche cumana Wallr. // Theoretical and Applied Genetics. – 2022. – Vol. 135. – No. 2. – P. 501–525.

16. Гучетль С.З., Савиченко Д.Л. Анализ сцепления гена устойчивости к расе G заразихи с микросателлитными локусами у линии-донора подсолнечника селекции ВНИИМК RGP1 // Масличные культуры. – 2021. – Вып. 2 (186). – С. 3–9.

17. База данных открытого доступа GenBank: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.ncbi.nlm.nih.gov.

18. Wang X., Wang L. GMATA: an integrated software package for genome-scale SSR mining, marker development and viewing // Frontiers in Plant Science. – 2016. – Vol. 7. – P. 1350. DOI: 10.3389/ fpls.2016.01350.

19. Онлайн-ресурс Primer-BLAST: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.ncbi.nlm.nih. gov/tools/primer-blast.

20. Ye J., Coulouris G., Zaretskaya I. [et al.]. Primer-BLAST: A tool to design target-specific primers for polymerase chain reaction // BMC Bioinformatics. – 2012. –Vol. 13. – No. 134. DOI: 10.1186/1471-2105-13-134.

21. Badouin H., Gouzy J., Grassa C.J. [et al.]. The sunflower genome provides insights into oil metabolism, flowering and Asterid evolution // Nature. – 2017. – Vol. 546. – No. 7656. – P. 148–152. DOI: 10.1038/ nature22380.

22. Референсный геном подсолнечника: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/assembly/GCF_ 002127325.2.

23. Okonechnikov K., Golosova O., Fursov M. Unipro UGENE: a unified bioinformatics toolkit // Bioinformatics. – 2012. – Vol. 28. – No. 8. – P. 1166–1167. DOI: 10.1093/bioinformatics/ bts091.

24. Wickham H. Elegant graphics for data analysis (ggplot2) // Applied Spatial Data Analysis R. – 2009. – P. 65–90.

25. Программная среда R для статистических вычислений и графики: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.r-project.org/

26. Boom R., Salimans M.M., Jansen C.L., Wertheim-van Dillen P.M. [et al.]. Rapid and simple method for purification of nucleic acids // Journal of clinical microbiology. – 1990. – Vol. 28. – No. 3. – P. 495–503.

27. Онлайн-ресурс Multiple Primer Analyzer: [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.thermofisher.com/nl/en/home/brands /thermo-scien-tific/molecular-biology/molecular-biology-learning-cen-ter/molecular-biology-resour-ce-library/thermo-scientific-web-tools/multiple-primer-analyzer.html.

Сведения об авторах

Д.Л. Савиченко, млад. науч. сотр.
С.З. Гучетль, зав. лаб., вед. науч. сотр., канд. биол. наук
Е.Д. Логинова, лаборант-исследователь

Журнал "масличные культуры"| Номер свидетельства: ПИ № ФС 77 - 75231 от 07.03.2019 |
Политика конфиденциальности | Политика обработки cookie-файлов